測定用乙醇固定的 DNA 的含量

材料與儀器

細胞樣品
PBS緩沖液 70%乙醇 PI液
離心機 恒溫箱 篩網

步驟

一、培養細胞的 DNA 含量的測定

制備單細胞懸液于 200μ l 的 PBS 緩沖液中； 加入 2ml 預冷的 70%乙醇，4℃保存；

1. 取單細胞懸液 1——2×106 個細胞于 PBS（PH=7.2）緩沖液中；

2. 300g 離心 5 分鐘，棄上清，反復兩次；

3. 重懸細胞于 0.5ml PBS 緩沖液中；

4. 將細胞懸液放置于 2——3ml 冷 70%乙醇中，混勻，保存于4℃，至少30 分鐘。 在 4℃條件下可保存 2——3 周。

2、新鮮組織的 DNA 含量的測定

1. 用 200mg 濕重組織用機械法制成單細胞懸液；

2. 500g 離心 5 分鐘；

3. 棄上清，重懸于 10ml 染色- 去污劑中；

4. 再過濾，用 200 目的篩網或 70——80μm 的篩網過濾；

5. 上機檢測。

3、石蠟包埋組織切片的 DNA 含量的測定

1. 從石蠟包埋切取切片 50 μ m 厚，2——3 片，制成單細胞懸液；

2. 用 PBS 緩沖液洗滌，500g 離心 5 分鐘，棄上清；

3. 加入 PI 液 1ml 室溫避光 30 分鐘；

4. 調整細胞濃度為 1×106/ml；

5. 上機檢測。

注意事項

1. 根據實驗的要求，固定劑也可選用 1——3%多聚甲醛;

2. 將乙醇作為固定劑時，乙醇應預冷至 0——4℃;

3. 細胞在固定時，固定劑應緩慢滴入細胞懸液中，使固定劑的濃度緩慢增 加，并不斷震搖，以免細胞成團（特別是用乙醇固定時） .

常見問題

如果想要檢測樣品的純度,那么還要再測一次280nm處OD值,計算二者的比率,若比率接近2，說明樣品純度較高。